DB51T 1203-2011 马铃薯M病毒、马铃薯S病毒检疫鉴定技术规程_第1页
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文档简介

16 川省 地 方 标 准 1/T 1203 2011 马铃薯 M 病毒、马铃薯 S 病毒检疫鉴定技术规程 2011 - 01布 2011 - 03施 四川省质量 技术 监督局 发布 2011 I 目 次 前言 . 范围 . 1 2 规范性引用文件 . 1 3 术语和定义 . 1 4 原理 . 1 5 试剂与材料 . 1 6 仪器 及用具 . 3 7 取样 . 3 8 实验室检验 . 3 9 结果判定 . 4 10 样品保存 . 4 附录 A(资料性附录) 马铃薯 M 病毒、马铃薯 S 病毒基本信息 . 5 附录 B(资料性附录) 马铃薯 M 病毒 验程序 . 6 附录 C(资料性附录) 马铃薯 S 病毒 验程序 . 8 附录 D(资料性附录) 马铃薯 M 病毒 验程序 . 10 附录 E(资料性附录) 马铃薯 S 病毒 验程序 . 12 2011 言 本标准分为范围、 规范性引用文件 、 术语和定义、原理、试剂与材料、仪器及用具、取样、实验室检验、结果判断、样品保存等部分。 本标准由四川省农业厅提出并归口。 本标准起草单位:四川省农业厅植物检疫站 。 本标准主要起草人: 宁红、万佳、刘可、郭迪金、吴志平、黄玲、李耄 1203 2011 I 马铃薯 M 病毒、马铃薯 S 病毒检疫鉴定技术规程 1 范围 本标准规定了马铃薯 见附录 A) 、马铃薯 见附录 A)的取样、 实验室检验、 结果判断及样品保存的 技术 要求 和方法 。 本标准适用于马铃薯感染 马铃薯 铃薯 检验和鉴定。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 业植物调运检疫规程 868铃薯卷叶病毒、马铃薯 病毒检验鉴定技术规程 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本标准。 目标条带 据某种病毒 特异的碱基序列设计特异引物,通过 到的与引物设计长度吻合的 标条带的存在,是判断某种病毒存在的标准。 本标准中 标条带 为 63035 注:改写 868义 4 原理 两种病毒 田间通过蚜虫和农事操作进行传播,远距离主要通过人为的引种、商品流通等 途径 传播,带毒块茎和种苗是该病毒 远距离 传播的主要载体, 两种病毒具有潜隐性, 根据病害症状很难确定马铃薯马铃薯 的 病毒种类, 薯块上一般不表现症状。 采 用免疫学和分子生物学方法,可快速根据有关判断标准进行马铃薯 马铃薯 鉴定。 5 试剂与材料 除非另有说明,在本标准中仅使用确认的分析纯试剂和蒸馏水或去离子水或相当纯度的水。 疫学检验试剂 捉抗体( 铃薯 M 病毒免疫球蛋白,抗体稀释度按市售产品要求进行。贮藏于 4 条件下备用。 1203 2011 铃薯 S 病毒免疫球蛋白,抗体稀释度按市售产品要求进行。贮藏于 4 条件下备用。 标抗体( 碱性磷酸酶标记的马铃 薯 M 病毒的免疫球蛋白抗体。按市售产品要求进行稀释,贮藏于4 条件下备用。 碱性磷酸酶标记的马铃薯 S 病毒的免疫球蛋白抗体。按市售产品要求进行稀释,贮藏于4 条件下备用。 被缓冲液( 取 g 碳酸氢钠( g 碳酸钠( 0.2 g 叠氮化钠( 用 1000 馏水溶解,并调 到 藏于 4 条件下备用。 涤液 (取 g 无水磷酸氢二钠( 0.2 g 氯化钾( 0.2 8.0 g 氯化钠( 0.5 g 吐温 20 ,用 1000 馏水溶解,并调整 到 品提取液( 取 1.3 g 无水硫酸钠( 20.0 g 聚乙烯吡咯烷酮( 4 0.2 g 叠氮化钠( 2.0 g 级鸡蛋清白蛋白粉、 20.0 g 吐温 20,用 1000 涤液溶解,并调整 到 藏于 4 条件下备用。 标抗体稀释缓冲液( 取 0.2 g 牛血清 白蛋白(或脱脂奶粉)、 2.0 g 聚乙烯吡咯烷酮( n)、 g 叠氮化钠( 用 100 涤缓冲液溶解,并调整 到 藏于 4 条件下备用。 物缓冲液( 用 80 菌蒸馏水将 g 氯化镁( g 叠氮化钠( 9.7 己醇胺 解后,用盐酸调 到 容到 100 藏于 4 条件下备用。 物溶液( 将 5硝基苯磷酸盐( 解于 5 物缓冲液中。底物溶液制备需在孵育结束前 15 ,避光条件下制备。 止液 12 g 氢氧化钠( 于 100 馏水。 验试剂 洛尼鼠白血病病毒反转录酶 ( 100 U/l 。 冲液 40 20 2冰醋酸调 冲液( 5x 50 100 0.1 10 50%甘油。 0 冲液 100 500 5 抑制剂( 10 U/l 。 T 增强剂( 水乙醇( L 裂解液。 蛋白液。 。 0 洗液。 蒸水( 氮 ( 物 1203 2011 游引物( 基序列 : 5 - ,下游引物( 基序列 : 5 ,用双蒸水稀释至 20M 。 游引物( 基序列 : 5 - ,下游引物( 基序列 : 5 - ,用双蒸水稀释至 20M 。 00NA 1500 酚蓝( 脂糖凝胶 称取 1.5 g 琼脂糖缓缓 倒 入 250 角瓶内,加入 100 微波炉中加热 1 解后,再加入 5 L 生物染料,倒入调平并安放适当梳齿的制胶板上,冷凝后小心拔出梳齿。 6 仪器及用具 仪器及用具包括: 聚乙烯微量滴定板 根据样品数量选用 40孔和 96孔两种规格 ; 移液器 2 L 10 L、 10 L 50 L、 10 L 200 L、 200 L 1000 5 天平 1/100 g, 1/1000 g; 培养箱 ; 台式高速离心机 ; 酶联免疫检测仪 ; 水平电泳仪 ; 凝胶成像系统 ; 研钵 内径 60 80 剪刀 ; 冰箱 ; 超低温冰箱; 过滤柱 涡旋混匀器 。 7 取样 株取样 取样方法按 868868 薯(块茎)取样 按 8 实验室检验 1203 2011 马铃薯 M 病毒 检验方法 见 附录 B。 如采用认可的试剂盒,按说明操作。 铃薯 S 病毒 检验方法 见 附录 C。 如采用认可的试剂盒,按说明操作。 马铃薯 M 病毒 样品的制备与检验 方法见 附录 D。 如采用认可的试剂盒,按说明操作。 铃薯 S 病毒 样品的制备与检验 方法见 附录 E。 如采用认可的试剂盒,按说明操作。 9 结果判定 阴性对照 阳性对照 性对照 倍的前提下, 样品孔 倍 时 ,判定为阳性反应,即样品带 相应的被检病毒 ;否则判定为阴性 反应 ,即样品不带 相应的被检病毒 。 阴性对照无扩增条带,且阳性对照出现 630 前提下 ,样品 30 定为阳性反应,即样品带 否则判定为阴性 反应 ,即样品不带 在 阴性对照无扩增条带,且阳性对照出现 435 前提下 ,样品 35 定为阳性反应,即样品带 否则判定为阴性 反应 ,即样品不带 10 样品保存 经检疫鉴定后的样品,应在 保存三个月,以备复验、谈判和仲裁,保存 期满后,需进行灭活处理。 1203 2011 V A A 附 录 A (资料性附录) 马铃薯 M 病毒、马铃薯 S 病毒基本信息 类 铃薯 简称 香石竹潜隐病毒属 。 病毒粒体微曲线状,大小 650 12死温度 65 71,稀释限点 100 1000倍, 20体外存活期几天。引起马铃薯小叶病。 铃薯 简称 香石竹潜隐病毒属 。病毒粒体线形,长 650汁液稀释限点 1 10倍,钝化温度 5560 ,体外存活期 3 4天 。 在马铃薯上引起轻度皱缩花叶或不显症 , 其寄主 范围较窄,系统侵染的植物仅限于茄科的少数植 物 害 铃薯 害 症状 马铃薯 要侵染茄科,还可侵染藜科和豆科植物。 铃薯幼苗期小叶片表面有油脂状光泽,同时小叶迅速开始向下卷曲,叶背出现条斑坏死;随着马铃薯生长发育,产生明显花叶,叶片严重变形,并很快黄化至干枯;病株严重萎缩和矮化,其株高只相当于健株的 1/3高度。 引起病株小叶脉间花叶、 畸形和顶叶卷曲 。 植株受 度在 24 以上,病症隐蔽。该病毒是马铃薯上常见的病害,可引起较大的产 量损失,在东欧引起的产量损失达 40%。 铃薯 害 症状 马铃薯 常 不表现症状,可持续存在马铃薯薯块中,并通过薯块作远距离传播。在田间该病毒传播很快,传播范围广,既可通过叶片接触传播,也可通过蚜虫传播,种植一季后感染率可高达 70%,可使马铃薯减产 10当与马铃薯 减产 20 播途径 两种病毒 田间通过蚜虫和农事操作进行传播,远距离传播主要通过人为的引种、商品流通等,带毒块茎和种苗是该病毒传播的主要载体。 1203 2011 B 附 录 B (资料性附录) 马铃薯 M 病毒 验程序 被抗体 被 向 酶联反应板 每孔加入 100 将酶联反应板置于保湿容器中,室温孵育 4 h 或 4 冰箱过夜。 板 向每个反应孔中加入 200 速倒出,重复 2次。洗板完成后将酶联板倒置于吸水纸上,吸干反应孔中残留液体。 样 品制备 将待测样品剪碎,取 0.3 入 1 加入 2 余样品于 冰箱保存备查,在制样时应注意 防止 样品的 交叉污染。 样 用 移液器 将制备好的样品加入酶联反应板孔内,每个样品三次重复,每孔 100L。 设置阳性对照、马铃薯健康组织研磨液阴性对照和包被缓冲液空白对 照 。加样完成后将酶联反应板置于保湿容器中, 室温孵育 2 冰箱 12 h。 板 在每个反应孔加满洗涤液,迅速倒出,再加满洗涤液,静置 3 复 3次。洗板完成后将酶联板倒置于吸水纸上,吸干反应孔中残留液体。 合酶标抗体 酶标抗体 向酶联反应板每孔加入 100 于保湿容器中 室温孵育 2 h。 板 同 色 每孔加入 100 L 底物溶液。 25 避光孵育 30 60 阳性对照显色。 1203 2011 止反应 显色后在每孔中加入 50 L 终止液。记录检 测 结果,存档备查。 果 测定和 记录 用酶联检测仪测定 并记录 光密度值 ( 。 1203 2011 C 附 录 C (资料性附录) 马铃薯 S 病毒 验程序 被抗体 被 向 酶联反应板 每孔加入 100 将酶联反应板置于保湿容器中,室温孵育 4 h 或 4 冰箱过夜。 板 向每个反应孔中加入 200 速倒出,重复 2次。洗板完成后将酶联板倒置于吸水纸上,吸干反应孔中残留液体。 样 品制备 将待测样品剪碎,取 0.3 入 1 加入 2 余样品于 冰箱保存备查,在制样时应注意 防止 样品的交叉污染。 样 用微量进样器将制备好的样品加入酶联反应板孔内,每个样品三次重复,每孔 100L。 设置阳性对照、马铃薯健康组织研磨液阴性对照和包被缓冲液空白对 照 。加样完成后将酶联反应板置于保湿容器中,室温孵育 2 冰箱 12 h。 板 在每个反应孔加满洗涤液,迅速倒出,再加满洗涤液,静置 3 复 3次。洗板完成后将酶联板倒置于吸水纸上,吸干反应孔中残留液体。 合酶标抗体 酶标抗体 向酶联反应板每孔加入 100 于保湿容器中室温孵育 2 h。 板 同 色 每孔加入 100 L 底物溶液。 25 避光孵育 30 60 阳性对照显色。 1203 2011 止反应 显色后在每孔中加入 50 L 终止液。记录检 测 结果,存档备查。 果 测定和 记录 用酶联 检测仪测定 并记录 光密度值 ( 。 1203 2011 X D D 附 录 D (资料性附录) 马铃薯 M 病毒 验程序 采用 给出该试剂盒信息是为了方便标准使用者,如果等效产品具有相同效果,则可使用这些等效产品) 提取马铃薯卷叶病毒 取 50 100 块需经发芽后切取幼芽),在液氮中迅速研磨成粉末状,转移粉末至预冷的 1.5 入 500 用前按 入 20 L),涡旋剧烈震荡 5 匀浆液转移至 12000 心 2 5 心吸取上清液至无 离心管中,吸头尽量避免接触收集管中的细胞碎片沉淀。缓慢加入上清 液 匀,得到的溶液和沉淀一起转入 12000 掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。向吸附柱 00 12000 废液,将吸附柱放回收集管中。向吸附柱 00 W, 12000 废液,将吸附柱放回收集管中,重复漂洗一次。漂洗完后,将吸附柱在 12000 去除残余液体,并在室温下放置片刻。将吸附柱放入一个新的 膜中央加入 50 L 100 温放置 2 2000 到 转录 应体系 表 铃薯 M 病毒 应体系 反应物 模板 2 T RT 入量( L) 1 序 反转录程序为: 42 , 50 94 , 5 4 保存。 应体系 表 应体系 反应物 101 P2 合酶 的 入量( L ) 1 4 4 1203 2011 应程序 反应程 序为: 94 3 94 30 59 30 72 30 30次循环; 72 10 4 保存。 增产物检测 脂糖凝胶电泳 将制胶板同制好的琼脂糖凝胶一并放入水平电泳槽,取 5 以及 2 L 100NA 入样孔内。电泳缓冲液 1 100 V,电泳 30 果观察和记录 电泳结束后,取出琼脂糖凝胶,放入凝胶成像系统中,观察 并记录 1203 2011 E 附 录 E (资料性附录) 马铃薯 S 病毒 验程序 同 转录 应体系 应体系见表 表 铃薯 S 病毒 应体系 反应

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