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文档简介
1、用于侵袭、迁移等试验的细胞计数及铺板实验步骤1、 准备工作用75%的酒精擦拭双手,同时用酒精棉球擦拭超净台。 2)将 培养液、实验所需材料也放入超净台进行灭菌(血清、培养基除外)3)倒置显 微镜下,观察细胞的状态,是否已经长满培养瓶,需要进行分瓶。2、弃去培养基,用枪尽量去培养基。贴壁加入 5mlPBS液清洗一遍,四个方 向晃动倒掉。3、 将0.25%胰酶600ul加入培养皿内,拍皿,上下左右铺匀,37消化30 分钟左右,随时观察,见到细胞泥沙状留下时,即消化完全.4、加入4ml的含5%血清的新鲜培养基,反复吹打消化好的细胞使其脱壁 并分散,制成细胞悬液,然后装到 15ml离心管中。1000r
2、pm,3min.5、弃上清。用PBS 3ml洗细胞,吹打或涡旋混匀,洗 2次,离心 1000rpm,3min.弃上清。&配细胞稀释液(BSA终浓度为0.1%).每种细胞需3ml稀释液,共6个样 品,所以配20ml稀释液(无血培20ml+10%BSA 200ul.)7、细胞沉淀中加3ml细胞稀释液,吹打混匀,即得稀释过的细胞悬液。8、细胞计数板每孔加15ul悬液。每个样品计数2次,算均值。(8个大格 总数/8=数值*104)9、根据铺板密度,计算稀释过的细胞悬液用量,剩余体积用细胞稀释液补。普通的细胞计数及铺板(免疫荧光,WB等不需定量)实验步骤1、 准备工作用75%的酒精擦拭双手,同时用酒精棉
3、球擦拭超净台。 2)将 培养液、实验所需材料也放入超净台进行灭菌(血清、培养基除外)3)倒置显 微镜下,观察细胞的状态,是否已经长满培养瓶,需要进行分瓶。2、弃去培养基,用枪尽量去培养基。贴壁加入 5mlPBS液清洗一遍,四个方 向晃动倒掉。3、 将0.25%胰酶600ul加入培养皿内,拍皿,上下左右铺匀,37消化30 分钟左右,随时观察,见到细胞泥沙状留下时,即消化完全.4、加入4ml的含血清的新鲜培养基,反复吹打消化好的细胞使其脱壁并分 散,制成细胞悬液,然后装到15ml离心管中。1000rpm,3min.若细胞较多,则 需稀释。5、取上述1ml细胞悬液,在加1ml含血清的新鲜培养基,混匀
4、。&细胞计数板每孔加15ul悬液。每个样品对角线计数2次,算均值。7、根据铺板密度,计算稀释过的细胞悬液用量,剩余体积用含血清的新鲜培养基1. 不健康的细胞质中有空泡,细胞内有颗粒样物质,细胞间空隙增大,变形, 不规则,失去原有的特点。2. 是否污染:传代或换液24-48 h注意观察细胞是否被污染,污染的细胞培养液变浑浊, 镜下可见有大量菌丝。如果细胞生长缓慢,生长特性改变,胞质内颗粒性物质增 多,尽管培养液不变浑浊,考虑可能有支原体污染。污染的细胞立即从培养箱中 取走,以免污染其它细胞 。3. 皿用20天左右,可更换。4. 分清无血培、血培的用途。2012-09-03实作如下:细胞株计数Sh
5、luc114*104 /ml10*105 个/114*104 =0.877 ml=877ulShE138*104/ml725ulSHF140*104/mlP112*104/mlB4178*10 /ml、常规收集细胞、消化、洗涤后,加 3ml细胞稀释液,悬匀后计数如此类推将细胞密度调整为5*105个/ml,每个样品 总体积为2ml.则所需 细胞数为2*5*10 5=10*105 个。稀释过的细胞悬液体积补加细胞稀释液体积87711237251275714128689311075621438从以上调整过密度的细胞悬液中取适量进行transwell及SRB实验二、Tran swell检测肿瘤细胞迁移
6、实验1. 在板孔(下室)中加入600 ul/well含有10%血清培养基作为引诱剂,小室底部 接触培养基。2. 轻轻的在细胞小室的上层加入140ul /well细胞悬液(若细胞密度为5 x105 cell/ml,则上室中共加入 5 x 105 cell/ml x140ul=7 x 104cell)。37 C 孵育 24 小 时(孵育时间根据实验调整,12-36小时)3. 孵育结束,小心取出细胞小室,用棉签轻轻 擦去上室液体。移到预先加入800 ul /well 4%多聚甲醛或70%甲醇的下室中,室温固定 30分钟。4. 小心取出细胞小室,用吸干上室固定液。(可4保存,隔日再做。)800 ul/ wellPBS加入下室洗3次。室温晾干。5. 800 ul/ well 0. 1%结晶紫染色 30min。6. 迅速将小室浸没到ddH2O浸泡数次,去除多余的染料。吸去上室多余液体完全干燥小室。7. 显微镜下观察结果,随机选取 3个不同的视野拍照。8.三、SRB51取24孔板,
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