LYT 3494-2026《食用林产品检测技术》（纯净版）

1范围本文件规定了食用林产品中粗多糖的分光光度法测定方法。2规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法3术语和定义本文件没有需要界定的术语和定义。4原理多糖在浓硫酸的作用下,先水解成单糖,并迅速脱水生成糖醛衍生物,与苯酚反应生成的橙黄色溶液在490nm处有特征吸收,根据吸光度的大小来测定多糖的含量。5试剂除非另有规定,仅使用分析纯试剂,试验用水应符合GB/T6682中规定的二级水。5.1试剂5.1.1硫酸(H2SO4)。5.1.2苯酚(C6H6O)。5.1.3无水乙醇(C2H6O)5.1.4石油醚(CnH2n+2)(30~60℃)。5.1.5冰乙酸(CH3COOH)。5.1.6三水乙酸钠(CH3COONa·3H2O)。5.1.7碘化钾(KI)。5.1.8碘(I2)。5.1.9高峰氏淀粉酶:酶活力≥100U/mg。5.2试剂配制15.2.1乙酸乙酸钠溶液(0.2mol/L,pH=4.8):准确称取27.22g三水乙酸钠(5.1.6),加入900mL12水溶解,用冰乙酸(5.1.5)调节pH至4.8,用水定容至1000mL。5.2.2乙醇溶液(80+20):取800mL无水乙醇(5.1.3),用水定容至1000mL。5.2.3苯酚溶液(50g/L):准确称取5.00g苯酚(5.1.2)于100mL水中,溶解。现用现配。5.2.4碘试剂(碘化钾碘试剂):称取3.6g碘化钾(5.1.7)溶于20mL水中,加入1.3g碘(5.1.8),溶解后加水定容100mL。5.2.5淀粉酶溶液(5g/L):称取高峰氏淀粉酶(5.1.9)0.5g,加100mL水溶解。临用现配。5.3标准品葡萄糖(C6H12O6):有证标准物质。5.4标准溶液配制葡萄糖标准储备溶液(100mg/L):称取0.0100g葡萄糖(5.3)于100mL容量瓶中,加水溶解,定容分别吸取0mL、0.2mL、0.4mL、0.6mL、0.8mL、1.0mL的标准葡萄糖标准储备溶液置于10mL具塞试管中,用蒸馏水补至1.0mL。向试液中加入1.0mL苯酚溶液(5.2.3),然后快速加入5.0mL硫酸(5.1.1),静置10min。充分混合后将试管放置于30℃水浴中反应20min,490nm测吸光度。以葡萄糖质量浓度为横坐标,吸光度值为纵坐标,制定标准曲线。6仪器设备6.1可见分光光度计。6.2高速离心机,10000r/min。6.3电子天平,感量0.0001g。6.4恒温水浴锅:控温精度±0.5℃。6.5超声波清洗器,超声功率>250W。6.6索氏抽提仪。7样品预处理对于脂肪含量较高的样品(如核桃、油茶籽等),称取2g~5g(精确至0.001g)样品于定量滤纸包裹,用索氏抽提法,加石油醚(5.1.4)回流4h除去脂肪。残留物待进一步提取。8多糖提取8.1脂肪含量较高样品将7中残留物全部转入50mL离心管,加入乙醇溶液(5.2.2)25mL,超声提取15min后,8000r/min离心5min,倾去上清液,重复操作2次。用100mL纯水将样品洗至200mL烧杯,记录总重。样品置于沸水浴提取2h,期间用玻璃棒搅拌。取出冷却至室温,称量,用纯水补足失重,过滤。8.2其他样品新鲜样品称取试样2g~5g(精确至0.001g),干制样品称取试样0.2g~0.5g(精确至0.0001g),于50mL离心管,其余步骤按照8.1自“加入乙醇溶液(5.2.2)”起依法操作。39淀粉干扰判断取滤液4mL于10mL试管中,加0.5mL碘试剂(5.2.4),摇匀,观察是否有显色反应,若溶液呈蓝色,则证明存在淀粉干扰。若无淀粉干扰,可直接测定。10提取液酶解若验证存在淀粉干扰,取滤液15mL至25mL比色管中,加1mL的淀粉酶溶液(5.1.3),加0.5mL乙酸钠缓冲液(5.2.1),盖上塞子,于60℃水浴保温1h,期间用碘试剂判断淀粉干扰,待淀粉完全酶解后,再加热煮沸5min,用水定容至25mL。取滤液或酶解液2mL于15mL塑料离心管,加8mL无水乙醇(5.3)充分摇匀,10000r/min离心3min。弃去清液,再分别用10mL乙醇溶液(5.2.2)清洗2次(与无水乙醇清洗方式一致),不溶物即为粗多糖。用水溶解并定容至10mL,此液体为待测液,吸取1.00mL待测液于10mL具塞试管中,按标准曲线测定(5.4)步骤操作。以相应试剂为空白。在490nm处测定试样吸光度,用标准曲线计算测定液中粗多糖的含量。样品中无淀粉干扰时多糖含量X(g/100g)按式(1)计算:X……………(1)式中:m1—从标准曲线上查得试样上机液中含糖量,单位为微克(μg);m2—试样质量,单位为克(g);V1—试样定容体积,单位为毫升(mL);V2—分取试液体积,单位为毫升(mL);V3—醇沉后粗多糖定容体积,单位为毫升(mL);V4—比色时移取样液体积,单位为毫升(mL);10-6—μg换算成g的换算系数;100—g/g换算成g/100g的换算系数;0.9—葡萄糖换算成葡聚糖的校正系数。样品中有淀粉干扰时多糖含量X(g/100g)按式(2)计算:X……………(2)式中:m1—从标准曲线上查得试样上机液中含糖量,单位为微克(μg);m2—试样质量,单位为克(g);V1—试样定容体积,单位为毫升(mL);4V2—分取样液用于酶解体积,单位为毫升(mL);V3—酶解液定容体积,单位为毫升(mL);V4—分取酶解后样液体积,单位为毫升(mL);V5—醇沉后粗多糖定容体积,单位为毫升(mL);V6—比色时移取样液体积,单位为毫升(mL);10-6—μg换算成g的换算系数;100—g/g换算成g/100g的换算系数;0.9—葡萄糖换算成葡聚糖的校正系数。计算结果保留3位有效数字。在重复性条件下获得的两次独立测试结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。14检出限和定量限当试样称样量为2g,本方法检出限为0.3g/100g,定量限为1g/100g。5本文件规定了花椒中花椒酰胺类物质总量的高效液相色谱测定方法。本文件适用于花椒中花椒酰胺类物质总量的测定。16规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法17术语和定义本文件没有需要界定的术语和定义。花椒中花椒酰胺类物质主要包括羟基α山椒素、羟基β山椒素、羟基γ山椒素和羟基ε山椒素。试样中的花椒酰胺类物质经甲醇提取后,通过C18反相色谱柱进行分离,利用配备二极管阵列检测器(DAD)的高效液相色谱仪在270nm波长处进行检测。以羟基α山椒素为标准品,采用峰面积外标法定量分析试样中上述四种花椒酰胺类物质的含量。19试剂和材料除非另有规定,仅使用分析纯试剂,试验用水应符合GB/T6682中规定的一级水。19.1.1乙腈(C2H3N):色谱纯。19.1.2甲醇(CH3OH):色谱纯。19.1.3冰乙酸(CH3COOH)。冰乙酸溶液(1+99):取10mL冰乙酸(19.1.3),用水定容至1L。羟基α山椒素(C16H25NO2),CAS号:83883107,纯度≥98%。619.4标准溶液配制(19.1.2)溶解,并定容至10mL,此储备液的浓度为1000μg/mL。羟基α山椒素储备液(19.4.1)于6个10mL的容量瓶中,用甲醇(19.1.2)稀释,定容至10mL,得到浓20仪器设备20.1高效液相色谱仪,配有DAD检测器。20.2分析天平,感量0.0001g。20.3恒温水浴锅:控温精度±0.5℃。20.4超声波清洗器,超声功率240500W。20.5高速粉碎机,转速大于3000rpm。21样品预处理干花椒:取去除杂质后的干花椒100g,用高速粉碎机粉碎后过40目筛,混匀备用;鲜花椒:取去除杂质后的鲜花椒粒200g,经组织捣碎机捣碎后,混匀备用。21.2试样提取称取干样1g或鲜样5g(精确至0.001g)置于具塞烧瓶中,加甲醇(19.1.2)50mL,室温超声萃取两次,每次15min,冷却至室温,转移至100mL容量瓶,甲醇定容,移取上清液10mL于50mL容量瓶定容,经0.22μm滤膜过滤,待测。22分析计算a)色谱柱:C18硅胶色谱柱,4.6×250mm,5.0μm,或性能相当的色谱柱。b)流动相:乙腈∶1%冰醋酸水溶液(40∶60,V/V)。c)流速:1.0mL/min。e)进样量:20μL。f)检测波长:270nm。22.2标准曲线的绘制按测定条件(22.1)对系列对照品工作溶液(19.4.2)进行测定,以色谱峰峰面积响应值为纵坐标,对应工作溶液的浓度为横坐标,绘制标准曲线。22.3样品测定按照测定条件(22.1)对样品溶液进行测定,通过比较上机液中花椒酰胺的保留时间与标准色谱图进7行定性分析。计算上机液中4种花椒酰胺类物质特征峰的总面积,根据标准曲线查得相应的羟基α山椒素浓度,以此作为试样中花椒酰胺类物质的总量。样品溶液的响应值应处于仪器测定的线性范围内,若供试样品溶液超出线性范围,则需用甲醇稀释后重新测定。22.4结果计算样品中花椒酰胺总含量,按公式(1)计算。X…………(1)式中:X—试样中花椒酰胺总含量,单位为毫克每克(mg/g);C—试样溶液中花椒酰胺的峰面积对应的质量浓度,单位为微克每毫升(μg/mL);V—试样定容体积,单位为毫升(mL);T—试样稀释倍数;m—试样的称样量,单位为克(g);计算结果保留3位有效数字。23精密度在重复性条件下获得的两次独立测试结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。24检出限和定量限当试样称样量为1g,定容体积为100mL时,本方法检出限为0.01mg/g,定量限为0.03mg/g。8(资料性)羟基α山椒素典型高效液相色谱图图1羟基α山椒素典型高效液相色谱图925范围本文件规定了油茶籽中茶皂素的可见分光光度计测定方法。本文件适用于油茶籽中茶皂素含量的测定。26规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法27术语和定义本文件没有需要界定的术语和定义。28原理采用香草醛浓硫酸分光光度法测定总皂苷含量。皂苷在强氧化性酸的作用下脱氢,再与香草醛加成显色,形成特征的紫红色化合物,在一定浓度范围内,吸光度与皂苷类化合物的含量成正比。29试剂和材料29.1试剂除非另有规定,仅使用分析纯试剂,试验用水应符合GB/T6682中规定的二级水。29.1.1无水乙醇(C2H5OH)。29.1.2甲醇(CH3OH)29.1.3香草醛(C8H8O3)。29.1.4冰醋酸(CH3COOH)。29.1.5硫酸(H2SO4)。29.1.6石油醚(CnH2n+2):沸程为30℃~60℃。29.1.7AB8大孔树脂:纯度≥98%。29.1.8无水氧化铝。29.1.9丙酮(C3H6O):色谱纯。29.1.10浓盐酸(HCl):质量分数为36%~38%。29.2试剂配制29.2.1乙醇溶液(70%,v/v):量取700mL无水乙醇,用水溶解,定容至1000mL。1029.2.2硫酸溶液(77%,v/v):量取200mL水,缓慢加入770mL浓硫酸,边加边搅拌,如果溶液温度过高,要等温度下降后分次加入,加完硫酸后,待温度降到室温,加水定容至1000mL。29.2.3乙醇溶液(85%,v/v):量取850mL无水乙醇,用水溶解,定容至1000mL。29.2.4香草醛乙醇溶液(8%,w/v):精确称取8g(精确至0.0001g)香草醛,用无水乙醇溶解,定容至100mL。29.3标准物质29.3.1标准物质制备取1kg粉碎的油茶籽饼,加入70%乙醇溶液(29.2.1)于80℃浸提2h,过滤、浓缩后过AB8大孔吸附树脂(29.1.7),85%乙醇(29.2.3)洗脱,浓缩、烘干,得淡黄色油茶皂素粗品;称取油茶皂素15g,加入150mL甲醇(29.1.2),70℃水温浴10min,滤去不溶物。然后加入300mL丙酮(29.1.9)溶液,静置沉淀1h。过滤,在沉淀物再加入150mL甲醇,滤去不溶物,再加入300mL丙酮(29.1.9)溶液,静置沉淀1h,反复操作三次后,将沉淀物真空干燥,即可得纯化的油茶皂素样品作为测定的标准样品。29.3.2标准物质定值利用差重法测定茶皂素标准物质的纯度:称取粉碎均匀的固体试样3g(精确至0.001g)置于三角烧瓶中,加20mL蒸馏水溶解后,加浓盐酸(29.1.10)25mL,接冷凝回流装置在100℃下水解2h。冷却后,过滤沉淀并水洗至中性,将沉淀与滤纸在60℃烘至恒重。将滤纸与沉淀物放入索氏提取器,70℃~80℃丙酮(29.1.9)提取5h~6h,蒸馏除去丙酮,接收瓶与提取物放入烘箱中,105±2℃至恒重,称量。油茶皂素含量按公式(2)进行计算:式中:C—皂素含量,单位为百分之(%);W1—恒重后的接收瓶与提取物重量,单位为克(g);W2—接收瓶重量,单位为克(g);W3—样品重量,单位为克(g);1223.54—油茶皂素理论平均分子量;602—油茶皂素水解物理论平均分子量。29.4标准溶液配制称取油茶皂素标准物质0.25g(精确至0.001g),用70%乙醇(6.1)溶解,并定容到50mL容量瓶中,摇匀,即得油茶皂素标准溶液。30仪器设备30.1可见分光光度计。30.2分析天平,感量0.001g。30.3电热恒温水浴锅:0℃~100℃。30.4玻璃层析柱:10mm×4.0cm(内径×长度)。1130.5鼓风干燥箱。30.6超声波清洗器。30.7索氏提取仪。31分析步骤31.1试样制备油茶籽在测定前先用石油醚脱脂。称取粉碎均匀的固体试样5g(精确至0.0001g),于100mL烧杯中,加入30mL70%乙醇溶液(29.2.1),超声提取30min,过滤,滤液全部转移至50mL容量瓶中,用70%乙醇溶液(29.2.1)定容至刻度,备用。31.1.2液体试样精确吸取5.0mL液体试样于50mL容量瓶中,用70%乙醇溶液(29.2.1)定容,摇匀,备用。当稀释后的试样基质较复杂时,需过滤至澄清液备用。31.2样品提取31.2.1树脂的预处理取适量树脂于烧杯中,使用无水乙醇(29.1.1)浸泡至覆盖树脂(29.1.7)2.5cm~5cm,缓慢搅拌树脂1min以充分混合,静置2h后倒出乙醇,并用蒸馏水冲洗至无醇味,重复1次,备用。31.2.2样品纯化精确吸取2.0mL制备的试样加入5g活化后的树脂中,摇匀后静置30min。将加样后的树脂移入层析柱中,再加2g无水氧化铝(29.1.8),用30mL水洗柱,弃去洗脱液,再用30mL70%乙醇溶液(29.2.1)洗脱,收集洗脱液于蒸发皿中,于60℃水浴挥干。31.3测定31.3.1仪器条件可见分光光度计的测定波长:545nm,采用1cm比色皿测定。31.3.2标准曲线的制作8%香草醛溶液(29.2.4)2mL,转动蒸发皿,使残渣溶解后移入10mL具塞试管中,于冰水中加入77%硫酸溶液(29.2.2)8mL,摇匀,于60℃水浴显色30min,然后置于冰水浴中冷却10min,取出试管置于室温下直至温度与室温持平,以试剂空白为参比,在30min内在可见分光光度计上测得吸光度,并以吸光度对浓度值绘制标准曲线。31.3.3试样溶液的测定准确加入8%香草醛溶液(29.2.4)2mL于样品的蒸发皿中,转动蒸发皿,使残渣溶解后移入10mL具塞试管中,于冰水中加入77%硫酸溶液(29.2.2)8mL,摇匀,于60℃水浴显色30min,然后置于冰水浴中冷却10min,取出试管置于室温下直至温度与室温持平,以试剂空白为参比,在30min内在可见分12光光度计上测得吸光度。32结果计算试样中油茶皂苷的含量用质量分数X表示,单位为百分率(%),按公式(3)计算:式中:M1—由标准曲线计算得出的待测液中油茶皂苷的质量,单位为毫克(mg);V1—制备试样的体积,单位为毫升(mL);M2—样品的质量,单位为克(g);V2—纯化试样的体积,单位为毫升(mL)。计算结果保留至小数点后两位。33重复性在重复性条件下获得的两次独立测试结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。34检出限和定量限当试样称样量为5g,油茶籽、饼粕及溶液中检出限分别为150mg/kg、150mg/kg、100mg/kg。1335范围本文件规定了采用气相色谱质谱法测定木本油料油脂中脂肪酸及反式脂肪酸组成及含量的方法。本文件适用于木本油料油脂中脂肪酸及其反式脂肪酸含量的测定。36规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法37术语和定义本文件没有需要界定的术语和定义。38原理木本油料油脂在碱性条件下与甲醇进行酯交换反应生成脂肪酸甲酯,并在强极性固定相毛细管色谱39试剂和材料除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水。39.1试剂39.1.1异辛烷(C8H18):色谱纯39.1.2甲醇(CH3OH):色谱纯39.1.3氢氧化钾(KOH)39.1.4硫酸氢钠(NaHSO4)39.2试剂配制氢氧化钾甲醇溶液(2mol/L):称取13.1g氢氧化钾(29.1.3)溶于100mL甲醇中,可轻微加热溶解,冷却至室温后,过滤,即得澄清溶液。1439.3.137种混合脂肪酸甲酯标准品39.3.2十一碳酸甲酯标准品(C12H24O2,CAS号:1731868)。39.3.3顺5,11,14二十碳三烯酸甲酯标准品(C21H36O2,CAS号:7019854)39.4标准溶液配制39.4.137种混合脂肪酸甲酯标准工作溶液:取出1.00mL脂肪酸甲酯混合标液(39.3.1)至10mL容量瓶中,用异辛烷定容,贮存于-18℃以下冰箱,有效期为3个月。39.4.2十一碳酸甲酯内标溶液(1mg/mL):准确称取0.025g(精确至0.1mg)十一烷酸甲酯(39.3.2)3个月。39.4.3顺5,11,14二十碳三烯酸甲酯标准工作液(1mg/mL):准确称取0.010g(精确至0.1mg)顺5,11,14二十碳三烯酸甲酯(39.3.3)至烧杯中,加入异辛烷溶解,转入10mL容量瓶中,用异辛烷定容至刻度。在-18℃冰箱中可保存3个月。39.4.438种脂肪酸甲酯混合标淮溶液(0.5mg/mL):将37种混合脂肪酸甲酯标准工作液(39.4.1)与顺5,11,14二十碳三烯酸甲酯标准工作液(39.4.3)按体积比1∶1混合。40仪器设备40.1气相色谱质谱联用仪:气相色谱质谱,EI源。40.2分析天平:感量0.1mg。40.3旋涡振荡器。40.4具塞试管:10mL和50mL。40.5微孔滤膜:孔径0.22μm有机滤膜。41分析步骤称取10mg油脂,精确至0.1mg,置于50mL具塞试管中,加入1mL十一碳酸甲酯(39.4.2)作为内标,用异辛烷溶解并定容至刻度,分取4mL样品溶液至10mL比色管中,加入0.2mL氢氧化钾甲醇溶液(39.2),涡旋混匀1min,静置至澄清。加入1g硫酸氢钠(39.1.4),涡旋混匀1min,中和过量的氢氧化钾,静置澄清后,上清液经0.22μm有机滤膜过滤,滤液作为试样待测液。41.2仪器参考条件a)毛细管色谱柱:(88%氰丙基)芳基聚硅氧烷强极性固定相,柱长100m,内径0.25mm,膜厚c)载气流速:1.2mL/min。e)程序升温:初始温度140℃,保持5min,以1.8℃/min的速率升至250℃,保持10min。15f)进样量:1μLa)检测方式:选择离子监测方式(SIM),监测离子:m/z=55,67,74,79。b)电离方式:电子轰击电离源(EI源,电子能量70eV)c)离子源温度:230℃,传输线温度:250℃。41.3定性确证样品测定时,如果检出的色谱峰的保留时间与标准品相一致,并且在扣除背景后的样品质谱图中,所选择的离子均出现,而且所选择的离子丰度与标准品的离子丰度相一致(相对丰度>50%,允许±10%偏差;相对丰度介于20%~50%,允许±15%;相对丰度介于10%~20%,允许±20%偏差;相对丰度≤10%,允许±50%偏差),则可判断样品中存在目标化合物。41.4定量测定将脂肪酸标准测定液和试样待测液分别注入气相色谱质谱仪中,根据标准溶液色谱峰响应面积,采用内标法定量测定。42分析结果的表述试样中单个脂肪酸甲酯含量按式(1)计算:Xi……(1)式中:Xi—试样脂肪酸甲酯i含量,单位为克每百克(g/100g);Fi—脂肪酸甲酯i的响应因子;Ai—试样测定液中各脂肪酸甲酯i的峰面积;AC11—试样中加入的内标物十一碳酸甲酯峰面积;ρC11—十一碳酸甲酯浓度,单位为毫克每毫升(mg/mL);VC11—试样中加入十一碳酸甲酯的体积,单位为毫升(mL);m—试样的质量,单位为毫克(mg);100—将含量转换为每100g试样中含量的系数。脂肪酸甲酯i的响应因子按式(2)计算:Fi……(2)式中:Fi—脂肪酸甲酯i的响应因子;ρsi—混标中各脂肪酸甲酯i的浓度,单位为毫克每毫升(mg/mL);AC11—混标中十一碳酸甲酯的峰面积;Asi—脂肪酸甲酯i的峰面积;ρc11—混标中十一碳酸甲酯的浓度,单位为毫克每毫升(mg/mL)。结果保留3位有效数字。1643精密度在重复性条件下获得的两次独立测试结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。44定量限参见附录C。17单个脂肪酸甲酯标准品的分子式及CAS号单个脂肪酸甲酯标准品的分子式及CAS号见表A.1。表A.1单个脂肪酸甲酯标准品的分子式及CAS号脂肪酸甲酯脂肪酸简称CAS号162342721067073辛酸甲酯1111154癸酸甲酯1104295十一碳酸甲酯17318686十二碳酸甲酯1118207十三碳酸甲酯17318808十四碳酸甲酯1241079顺-9-十四碳一烯酸甲酯5621906810十五碳酸甲酯713264111顺10十五碳一烯酸甲酯9017652612十六碳酸甲酯11239013顺-9-十六碳一烯酸甲酯112025814十七碳酸甲酯173192615顺10十七碳一烯酸甲酯7519082816十八碳酸甲酯11261817反-9-十八碳一烯酸甲酯C18∶1n9t193762818顺-9-十八碳一烯酸甲酯11262919反,反9,12十八碳二烯酸甲酯C18∶2n6t256697420顺,顺9,12十八碳二烯酸甲酯C18∶2n6c11263021二十碳酸甲酯112028122顺,顺,顺6,9,12十八碳三烯酸甲酯1632632223顺11二十碳一烯酸甲酯239009224顺,顺,顺9,12,15十八碳三烯酸甲酯30100825二十一碳酸甲酯606490026顺,顺11,14二十碳二烯酸6101246218表A.1单个脂肪酸甲酯标准品的分子式及CAS号(续)脂肪酸甲酯脂肪酸简称CAS号27顺,顺,顺8,11,14二十碳三烯酸甲酯8c,11c,14cC20∶3n62106110928二十二碳酸甲酯92977129顺11,14,17二十碳三烯酸甲酯5568288730顺13二十二碳一烯酸甲酯112034931顺5,11,14-二十碳三烯酸甲酯5c,11c,14cC20∶3n6701985432二十三碳烯酸甲酯243397833顺5,8,11,14二十碳四烯酸甲酯256697834顺13,16二十二碳二碳烯酸甲酯6101247335二十四碳酸甲酯244247636顺5,8,11,14,17二十碳五烯酸甲酯273447637顺15二十四碳一烯酸甲酯273388238顺4,7,10,13,16,19二十二碳六烯酸甲酯256690719(资料性附录)38种脂肪酸甲酯标准溶液参考色谱图38种脂肪酸甲酯标准溶液参考色谱图见图B.1in说明:图中1~38分别对应以下化合物:1.C4:0;2.C6:0;3.C8:0;4.C1O:0;5.C11:0;6.C12:0;7.C13:0;8.C14:0;9.C14:l;10.C15:0;11.C15:l;12.C16:0;13.C16:1;l4.C17:0;15.C17:1;l6.C18:0;17.C18:1ng