临床标本采集操作规范

临床标本采集操作规范1采集前通用要求1.1患者准备饮食方面：空腹标本要求患者禁食8~12小时、禁饮4小时，禁食时长最长不超过16小时。禁食超过16小时可导致血清白蛋白降低3%~5%，总胆红素升高15%~20%，血糖降低15%~25%，甘油三酯降低10%~15%。餐后2小时血糖标本需从患者进食第一口食物开始计时，满2小时采集。高脂饮食后2~4小时采集的标本，血清甘油三酯水平可升高2~5倍，会干扰肝功能、电解质等多项指标检测。运动方面：采集前24小时需避免剧烈运动，采集前30分钟需静坐休息。短时间剧烈运动后，血清肌酸激酶（CK）可升高10%~50%，乳酸脱氢酶（LDH）升高10%~20%，血钾升高2%~5%；长期规律运动者睾酮、皮质醇水平可升高5%~10%。体位方面：采血时患者取坐位或卧位，避免站立时间过长。立位较卧位血浆容量减少10%~15%，可导致血清总蛋白升高5%~8%，白蛋白升高4%~6%，胆固醇升高3%~5%，血钾升高2%~4%。需长期监测的患者应固定采集体位，减少结果偏差。药物方面：采集前应尽量避免使用影响检验结果的药物，若因病情需要无法停药，需在申请单上注明药物名称、剂量、用药时间。如每日口服维生素C≥1g，可导致血糖、尿糖检测值降低10%~20%，隐血试验出现假阴性；使用头孢类抗生素可导致凝血酶原时间（PT）延长5%~15%；利尿剂可导致血钾降低10%~30%，血钠升高2%~5%。生理状态方面：女性患者应避开月经期采集尿液、粪便、阴道分泌物标本，经期采集可导致标本红细胞污染，出现假阳性结果。妊娠期女性白细胞计数可升高至（5~12）×10^9/L，中性粒细胞占比升高至70%~85%，需结合孕周判断结果。新生儿、婴幼儿标本采集需根据体重调整采血量，总采血量不得超过患者循环血量的1%，避免医源性贫血。1.2人员资质从事常规标本采集的人员需为执业护士、检验技师或经过临床标本采集专项培训并考核合格的医护人员，培训内容包括标本采集操作流程、质量控制要求、生物安全防护、职业暴露处置等，考核合格后方可独立操作。骨髓穿刺、脑脊液穿刺、浆膜腔穿刺等有创特殊标本采集，需由具备相应执业资质的医师完成，操作前需向患者或家属告知操作风险，签署知情同意书。1.3用物准备所有采集用物需符合国家医疗器械标准，在有效期内使用，一次性用物禁止重复使用。通用采集用物包括：止血带（一人一用，避免交叉污染）、0.5%碘伏或75%酒精消毒液、无菌棉签、符合YY/T0314标准的真空采血管/标本容器、一次性采血针/注射器、条码标识、锐器盒、医疗废物收集袋。特殊标本采集需配备专用用物：血培养需配备一次性血培养瓶（需氧瓶/厌氧瓶，含树脂的中和抗生素瓶按需选用）、一次性厌氧采集套装；血气分析需配备肝素化血气针、橡皮塞、冰浴装置；微生物标本需配备无菌容器、病毒保存液；病理标本需配备10%中性福尔马林固定液、病理标本袋。标本容器要求：无菌容器需符合GB15980灭菌标准，包装完整无破损；抗凝管添加剂含量准确，抗凝比例符合要求；固定液浓度准确，无挥发、无沉淀。1.4标本标识要求所有标本需粘贴唯一标识，标识内容需清晰完整，包括：患者姓名、性别、年龄、住院号/门诊号、标本类型、采集部位（必要时）、采集日期及时间（精确到分钟，血培养、血气分析、急诊标本需强制要求）、采集人签名/工号。禁止仅以床号、姓名作为唯一识别信息，避免同名患者标本混淆。标本标识需在采集前打印或书写完成，采集后立即粘贴于标本容器上，禁止先采集后补标识、禁止在病房提前打印标识未核对患者身份即粘贴。患者身份核对需采用两种以上识别方式，如床头卡核对+腕带核对，或姓名+住院号核对，确认无误后方可采集。2血液标本采集操作规范2.1静脉血液标本2.1.1适用范围：绝大多数临床血液检验项目，包括血常规、生化、免疫、凝血、血药浓度等。2.1.2穿刺部位选择：首选肘正中静脉、贵要静脉、头静脉，选择粗直、弹性好、无静脉瓣、无疤痕、无血肿、无皮疹的血管。避开输液侧肢体，若患者仅有一侧肢体可采血，需在输液对侧肢体采集，或停止输液30分钟后采集，采集前需弃去前5ml血液，避免输液成分污染标本。禁止在静脉留置针内采集常规检验标本，留置针标本污染率可达15%~25%，结果偏差率可达30%以上。婴幼儿、老年患者静脉条件差时，可选择手背、前臂、踝部静脉，新生儿可选择头皮静脉。2.1.3操作流程：（1）协助患者取坐位或卧位，手臂伸直置于枕垫上，暴露穿刺部位，在穿刺点上方5~7cm处绑扎止血带，止血带松紧以可触及远端动脉搏动为宜，绑扎时间不得超过1分钟。止血带绑扎超过2分钟可导致血液浓缩，总蛋白升高5%以上，血钾升高2%~3%，凝血因子活性升高5%~10%。（2）用0.5%碘伏或75%酒精以穿刺点为中心螺旋式消毒，消毒范围直径≥5cm，消毒2遍，待干30秒以上，禁止用棉签擦拭消毒区域，禁止反复穿刺消毒后的皮肤。（3）取出采血针，拔出针套，左手绷紧皮肤，右手持采血针，针头斜面向上，与皮肤呈15°~30°角刺入皮肤，进入静脉后见回血，将采血针另一端插入真空采血管，利用负压自动采血。（4）采血管采集顺序严格遵循CLSIH3-A6标准：血培养瓶→枸橼酸钠抗凝管（蓝头）→血清管（红头/黄头促凝管）→肝素抗凝管（绿头）→EDTA抗凝管（紫头）→血糖管（灰头，草酸钾-氟化钠）。该顺序可避免添加剂交叉污染，如EDTA污染枸橼酸钠管可导致凝血功能检测结果异常，肝素污染血清管可导致电解质检测出现偏差。（5）采集量严格按照采血管标识要求执行：枸橼酸钠抗凝管抗凝比例为1:9（0.3ml3.2%枸橼酸钠+2.7ml全血），采血量误差不得超过±10%，血量不足时APTT可延长10%~15%，PT可延长5%~10%；EDTA抗凝管采集量为2ml，采血量过多可导致抗凝不足，出现微凝块，影响血常规结果。（6）采血完成后，先松开止血带，再拔出采血管，最后拔出采血针，嘱患者用干棉签沿血管走行按压穿刺点3~5分钟，凝血功能障碍、口服抗凝药的患者需按压10~15分钟，禁止揉搓穿刺点，避免皮下血肿。（7）抗凝管采集后立即颠倒混匀5~8次，颠倒角度为180°，动作轻柔，避免剧烈震荡导致溶血。血清管采集后静置30~60分钟，待血液完全凝固后离心。2.1.4溶血预防：标本溶血是临床最常见的不合格标本类型，溶血后血清钾可升高20%~50%，LDH升高10%~30%，AST升高5%~10%，肌红蛋白升高15%~25%，严重影响结果准确性。预防措施包括：选择合适的采血针型号（成人用20~22G，儿童用22~24G）；避免从血肿部位采血；消毒后待皮肤完全干燥再穿刺；避免止血带绑扎过久、过紧；抗凝管混匀动作轻柔；禁止用力挤压穿刺部位。2.2动脉血液标本2.2.1适用范围：血气分析、乳酸检测、动脉血氨检测等。2.2.2穿刺部位选择：首选桡动脉，位置表浅，易于压迫止血，侧支循环丰富；其次为肱动脉、股动脉，婴幼儿可选择颞动脉。2.2.3术前评估：采集桡动脉前必须行Allen试验，评估尺动脉侧支循环功能。操作方法：同时压迫患者桡动脉和尺动脉，嘱患者反复握拳、松拳5~10次，至手掌皮肤苍白，随后松开尺动脉，若10秒内手掌恢复红润为Allen试验阳性，可进行桡动脉穿刺；若15秒后手掌仍未恢复红润为试验阴性，禁止行桡动脉穿刺，避免穿刺后桡动脉闭塞导致手部缺血坏死。2.2.4操作流程：（1）准备肝素化血气针，1000U/ml肝素溶液湿润管壁后排出多余肝素，残留肝素量不得超过0.1ml，避免标本稀释导致pH降低0.03~0.05，PaCO₂升高3~5mmHg，PaO₂升高5~10mmHg。（2）消毒范围直径≥8cm，消毒2遍，待干后戴无菌手套，左手触及动脉搏动最明显处，右手持血气针与皮肤呈30°~45°角刺入，见鲜红色血液自动涌入针管后停止进针，采集1~2ml血液。（3）拔针后立即用无菌纱布按压穿刺点5~10分钟，凝血功能障碍者按压15~20分钟，股动脉穿刺后需压迫20~30分钟，防止血肿形成。（4）采集后立即排出针管内的气泡，气泡量不得超过标本总量的1%，若气泡量>1%，可导致PaO₂升高10%~15%，PaCO₂降低5%~10%，pH无明显变化。排出气泡后立即用橡皮塞密封针头，双手搓动注射器5~10秒，使血液与肝素充分混匀，避免凝固。（5）标本采集后立即送检，室温下送检时间不得超过15分钟；若无法及时送检，需置于4℃冰浴中保存，保存时间不得超过1小时，避免细胞代谢导致pH降低、PaO₂下降、PaCO₂升高。（6）采集后需在申请单上注明患者体温、吸氧浓度（FiO₂）、呼吸频率、血红蛋白浓度、采集时体位，便于检验人员校正结果。2.3末梢血液标本2.3.1适用范围：婴幼儿、老年患者、静脉采血困难者的血常规、血糖、C反应蛋白、血型、快速传染病筛查等项目。2.3.2采集部位：成人首选左手无名指内侧，该部位神经分布少，痛感较轻，血供丰富；婴幼儿（<1岁）首选足跟内侧或外侧，避免采集指尖血防止损伤指骨；禁止采集水肿、冻疮、感染、有疤痕的部位。2.3.3操作流程：（1）用75%酒精消毒采集部位，待干30秒以上。（2）用一次性采血针刺入皮肤，深度为2~3mm，成人稍深，婴幼儿稍浅，避免过深损伤骨膜。（3）擦去第一滴血，第一滴血混有组织液，可导致红细胞计数降低5%~10%，血小板计数降低10%~15%，结果偏差较大。（4）待血液自然流出，用毛细血管吸取所需血量，禁止用力挤压穿刺部位，避免混入组织液导致标本稀释。（5）采集后用干棉签按压穿刺点1~2分钟，止血即可。（6）抗凝末梢血采集后立即颠倒混匀5~6次，避免凝固，15分钟内送检。2.4血培养标本2.4.1采集指征：患者出现以下情况之一时需采集血培养：发热≥38.5℃或低体温≤36℃；寒战、低血压、休克；白细胞计数>10×10^9/L（中性粒细胞百分比>80%）或<4×10^9/L；血小板减少；不明原因的感染、败血症可疑；感染性心内膜炎可疑；留置中心静脉导管超过72小时出现发热。2.4.2采集时机：最佳采集时机为寒战初期或发热高峰前1~2小时，此时血液中细菌浓度最高，阳性率可比发热高峰期采集高20%~30%。若患者已使用抗生素，需在下次抗生素给药前30~60分钟采集，或使用含树脂的中和抗生素培养瓶，可提高阳性率15%~25%。2.4.3采集套数与采血量：成人每次采集2~3套血培养，每套包括1瓶需氧培养瓶、1瓶厌氧培养瓶，每套总采血量为10~20ml，每瓶接种5~10ml血液。婴幼儿及儿童每次采集1~2套，每瓶接种1~5ml血液，婴幼儿（<1岁）每瓶≥1ml，1~6岁每瓶≥2ml，>6岁每瓶≥5ml。采血量不足会导致阳性率降低，每增加1ml采血量，成人血培养阳性率可提高3%~5%。2.4.4操作流程：（1）选择2处不同的外周静脉穿刺部位，如左肘静脉、右肘静脉，禁止从静脉留置针、中心静脉导管内采集血培养，导管来源血培养污染率可达20%以上。（2）皮肤消毒采用三步法：第一步用75%酒精擦拭穿刺部位，直径≥8cm；第二步用0.5%碘伏螺旋式消毒，待干60秒；第三步再用75%酒精脱碘（对碘过敏者仅用酒精消毒2遍，待干90秒）。消毒后禁止触摸穿刺部位。（3）血培养瓶瓶塞用75%酒精消毒，待干30秒，禁止用碘伏消毒瓶塞，避免碘进入培养瓶抑制细菌生长。（4）用注射器采集血液后，先注入厌氧培养瓶，再注入需氧培养瓶，避免空气进入厌氧瓶；若使用真空采血针采集，先注入需氧培养瓶，再注入厌氧培养瓶，采血针内的空气先进入需氧瓶，不影响厌氧瓶环境。（5）接种后轻轻颠倒混匀培养瓶7~8次，使血液与培养液充分混合，避免凝固。（6）标本采集后立即送检，送检时间不得超过2小时，若无法及时送检，需置于20~25℃室温保存，禁止冷藏，冷藏会导致脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌、流感嗜血杆菌等苛养菌死亡，阳性率降低10%~20%。2.4.5质量控制：血培养污染率需控制在3%以下，污染的主要原因包括皮肤消毒不彻底、标本采集操作污染、容器污染等，需定期对采集人员进行培训，考核消毒操作规范。3体液标本采集操作规范3.1尿液标本3.1.1标本类型与适用范围：（1）晨尿：清晨第一次排尿，膀胱内停留时间≥6小时，适合尿常规、尿沉渣、尿妊娠试验、尿微量白蛋白检测，结果稳定性好，阳性率高。（2）随机尿：任意时间留取的尿液，适合门诊、急诊患者的常规筛查，结果受饮食、运动影响较大。（3）餐后2小时尿：午餐后2小时留取的尿液，适合尿糖、尿蛋白、尿胆原检测，对糖尿病、肾病的筛查敏感度较高。（4）24小时尿：留取24小时内全部尿液，适合尿蛋白定量、尿肌酐、尿酸、尿电解质、17-羟皮质类固醇、17-酮类固醇等定量检测。（5）清洁中段尿：用于尿细菌培养、真菌培养，避免外阴部细菌污染。3.1.2采集方法：（1）常规尿标本：留取10~20ml尿液于干燥清洁的尿杯中，避免混有粪便、阴道分泌物、血液。女性患者需避开月经期，采集前清洗外阴；男性患者需翻洗包皮，避免包皮垢污染。（2）24小时尿标本：第一天早晨8点排空膀胱，弃去第一次尿液，之后所有尿液全部收集至干净的广口容器中，至第二天早晨8点排空膀胱，将最后一次尿液全部加入容器，记录24小时总尿量，精确到1ml，尿量误差不得超过±5%，否则定量检测结果偏差可超过10%。根据检测项目添加防腐剂：甲苯（适用于尿蛋白、尿糖、尿肌酐检测）每100ml尿液加0.5~1ml，覆盖尿液表面，隔绝空气；浓盐酸（适用于17-羟、17-酮、儿茶酚胺、尿钙检测）每100ml尿液加1ml，保持尿液pH<2；40%甲醛（适用于尿沉渣细胞计数、爱迪计数）每100ml尿液加0.5ml，固定细胞形态。防腐剂需在第一次留尿前加入，避免细菌繁殖。（3）清洁中段尿：女性患者先用碘伏消毒外阴、尿道口，男性患者消毒龟头、尿道口，然后弃去前段尿液，留取中间段尿液10~20ml于无菌容器中，立即加盖，避免污染。3.1.3送检要求：常规尿液标本需在1小时内送检，2小时内完成检测，室温下放置超过2小时可导致尿胆原降低20%~30%，红细胞、白细胞溶解30%~50%，细菌计数升高10倍以上。若无法及时送检，需置于4℃冰箱保存，保存时间不得超过6小时。3.2粪便标本3.2.1采集方法：（1）常规粪便标本：取新鲜粪便，选择带有粘液、脓血、病理异常的部分，外观正常的粪便需从表面、深处、粪端多处取样，采集量约5g（黄豆大小），稀便采集2~3ml。采集容器为干燥清洁的带盖便盒，禁止混有尿液、消毒剂、污水，避免破坏粪便中的细胞和寄生虫。（2）粪便培养标本：用无菌棉签取脓血粘液部分2~3g，置于无菌试管或增菌液中，立即送检。（3）寄生虫检查标本：留取全份新鲜粪便，检查阿米巴滋养体需保温（25~30℃）送检，30分钟内完成检测，滋养体在低温下失去活力，难以识别。检查蛲虫卵需用透明胶带于清晨排便前粘贴肛门周围皮肤，然后粘于载玻片上送检。（4）隐血试验标本：患者检查前3天禁食动物血、肝脏、铁剂、富含叶绿素的食物，避免服用维生素C、阿司匹林等药物，防止出现假阳性或假阴性结果。3.2.2送检要求：常规粪便标本需在1小时内送检，超过1小时可导致红细胞、白细胞溶解30%以上，寄生虫幼虫死亡。3.3脑脊液标本3.3.1采集方法：由临床医师行腰椎穿刺，必要时行小脑延髓池穿刺或脑室穿刺。采集的脑脊液分3~4管，每管1~2ml，采集顺序为：第1管用于微生物学检查（涂片、培养、核酸检测），第2管用于生化、免疫学、分子生物学检查，第3管用于常规、细胞学检查，第4管（可选）用于特殊项目检测。该顺序可避免穿刺时带入的皮肤细菌污染微生物检查标本，也可减少穿刺损伤导致的红细胞对常规细胞学检查的干扰。3.3.2送检要求：标本采集后立即送检，常规、生化检查需在1小时内完成，细胞学检查需在2小时内完成，微生物检查需在30分钟内送检。禁止冷藏脑脊液标本，脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌等苛养菌对低温敏感，冷藏可导致阳性率降低20%~30%。若无法及时送检，需置于20~25℃室温保存，保存时间不得超过4小时。3.4浆膜腔积液标本3.4.1分类：包括胸腔积液、腹腔积液、心包积液、关节腔积液，由临床医师行穿刺采集。3.4.2采集方法：根据检测项目分装标本：（1）常规细胞学检查：用EDTA抗凝管采集2~5ml，用于细胞计数、分类。（2）生化、免疫学检查：用肝素抗凝管采集2~5ml，用于蛋白、葡萄糖、乳酸脱氢酶、腺苷脱氨酶等检测。（3）微生物学检查：用无菌容器采集10~20ml，用于涂片、培养、核酸检测。（4）脱落细胞学检查：用洁净干燥容器采集5~10ml，或用枸橼酸钠抗凝，避免标本凝固。3.4.3送检要求：标本采集后1小时内送检，微生物标本立即送检。脱落细胞学标本若无法及时检测，可置于4℃冰箱保存24小时，其余标本禁止冷藏。3.5精液标本3.5.1采集前准备：患者禁欲3~7天，禁欲时间过短可导致精子浓度降低20%~30%，禁欲时间过长可导致精子活力降低15%~25%，畸形率升高10%~15%。采集前需清洁外阴、阴茎，避免污染。3.5.2采集方法：采用手淫法采集，将全部精液收集至干燥清洁的广口玻璃容器或塑料容器中，禁止使用避孕套采集，避孕套内含杀精剂和润滑剂，可导致精子活力降低50%以上，结果完全不可靠。若患者无法通过手淫法采集，可使用专用无杀精剂的精液采集套。3.5.3送检要求：标本采集后立即送检，保温（20~37℃），送检时间不得超过1小时，超过1小时精子活力可降低10%~20%。需在申请单上注明禁欲时间、采集时间、标本是否完整留取，若有精液遗漏，需告知检验人员，结果仅供参考。3.6阴道分泌物标本3.6.1采集前准备：月经干净后3~7天采集，采集前24小时禁止性生活、阴道冲洗、阴道上药，避免影响结果。3.6.2采集方法：患者取膀胱截石位，用无菌窥阴器暴露宫颈，用无菌棉签在阴道后穹窿处旋转3~5圈，蘸取分泌物，置于生理盐水试管中用于白带常规检查；若需检测HPV、TCT，需用专用宫颈采样刷，插入宫颈管内1~2cm，旋转5~10圈，刷取宫颈管及宫颈表面的脱落细胞，放入专用细胞保存液中。3.6.3送检要求：白带常规标本需在15分钟内送检，滴虫检查需保温（25~30℃），避免滴虫失去活力。HPV、TCT标本室温下可保存7天，4℃可保存14天。4分泌物与病原学标本采集操作规范4.1痰液标本4.1.1标本类型与适用范围：（1）常规痰标本：用于痰涂片、痰找癌细胞、痰抗酸杆菌检测。（2）痰培养标本：用于呼吸道细菌、真菌、结核分枝杆菌培养。（3）24小时痰标本：用于找抗酸杆菌、痰量记录，阳性率高于单次痰标本。4.1.2采集方法：（1）常规痰标本：清晨起床后，先用清水漱口3次，清除口腔内的食物残渣和细菌，然后用力咳出深部气管内的痰液，留取1~2口（约5~10ml）于洁净容器中。禁止留取唾液、鼻涕，唾液标本的鳞状上皮细胞>25个/低倍视野，属于不合格标本，结果不可靠。（2）痰培养标本：先用0.5%碘伏漱口2次，再用清水漱口1次，咳出深部痰液，留取3~5ml于无菌容器中，立即加盖。（3）24小时痰标本：第一天早晨8点漱口后咳出的第一口痰开始收集，至第二天早晨8点最后一口痰结束，全部痰液收集于广口容器中，记录总痰量，送检。4.1.3送检要求：标本采集后1小时内送检，室温下放置超过2小时可导致肺炎链球菌、流感嗜血杆菌等苛养菌死亡，阳性率降低20%~30%。若无法及时送检，置于4℃冰箱保存，保存时间不得超过2小时。4.2鼻咽拭子标本4.2.1适用范围：呼吸道病毒（流感病毒、新冠病毒、呼吸道合胞病毒等）核酸检测、抗原检测，以及化脓性扁桃体炎、白喉等细菌检测。4.2.2采集方法：（1）咽拭子：患者取坐位，张口发“啊”音，暴露咽后壁，采集者用无菌咽拭子越过舌根，擦拭双侧扁桃体、咽后壁、咽隐窝各3~5次，避免碰到舌头、口腔黏膜、唾液，防止污染。（2）鼻拭子：患者取坐位，头部微仰，采集者将鼻拭子沿一侧鼻孔鼻道底部缓缓插入，深入至鼻咽部（深度约为鼻孔到耳垂的距离的1/2），停留1~3秒，旋转3~5圈，取出后同法采集另一侧鼻孔。（3）采集后将拭子放入病毒保存液中，折断拭子杆，拧紧管盖，做好标识。4.2.3送检要求：病毒核酸检测标本采集后2小时内送检，若无法及时送检，4℃冰箱保存不得超过24小时，-20℃保存不得超过7天，-70℃可长期保存。细菌培养标本采集后立即送检，室温保存不得超过2小时。4.3脓液与创面分泌物标本4.3.1采集方法：（1）封闭性脓肿：消毒脓肿周围皮肤后，用无菌注射器穿刺脓肿，抽取脓液3~5ml，尽量抽取脓肿壁部位的脓液，该部位细菌浓度高，阳性率比脓液中心高30%~40%。若需做厌氧培养，抽取后立即排出注射器内的空气，将脓液注入厌氧培养瓶或厌氧转运管中。（2）开放性创面/溃疡：先用0.9%生理盐水冲洗创面，去除表面的分泌物和坏死组织，然后用无菌拭子擦拭创面基底部或溃疡边缘的新鲜分泌物，禁止擦拭创面表面的脓液和结痂，表面标本多为污染菌，无临床意义。（3）窦道分泌物：用无菌拭子深入窦道底部，擦拭窦道壁的分泌物，避免取窦道口的污染标本。4.3.2送检要求：标本采集后立即送检，厌氧培养标本需在30分钟内送达检验科，避免厌氧菌死亡。5组织病理标本采集操作规范5.1手术切除标本手术切除的组织标本需在离体后30分钟内放入10%中性福尔马林固定液中，固定液量为组织体积的5~10倍，确保组织完全浸没在固定液中。较大的实体标本（直径>2cm）需由手术医师沿最大面切开，厚度不超过0.5cm，再放入固定液，保证固定充分。固定时间：小标本（<2cm）固定4~6小时，大标本固定12~24小时，固定不足会导致细胞收缩、变形，影响病理诊断。标本需放入专用病理标本袋，袋外粘贴标识，注明患者姓名、住院号、标本名称、部位、数量，与病理申请单一同送检。禁止挤压、牵拉、灼烧组织，避免细胞形态破坏。5.2冰冻切片标本用于术中快速病理诊断，标本离体后不得放入固定液，需立即置于干燥无菌的标本袋中，放在干冰或冰盒内转运，30分钟内送达病理科。需在申请单上注明患者姓名、手术名称、标本部位、临床诊断、申请冰冻的原因。冰冻切片诊断准确率约为95%~98%，最终诊断以常规石蜡切片为准。5.3细针穿刺细胞标本适用于甲状腺、乳腺、淋巴结、浅表肿物的穿刺细胞学检查。采用22~25G细针穿刺，抽取细胞后立即涂片，涂片要均匀，厚度适宜，涂好后立即放入95%酒精中固定，固定时间不得少于15分钟。若采用