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文档简介
1、细胞培养的标准操作程序前言:目的:确保细胞的制备和培养符合要求。适用范围:适用于符合实验要求的患者外周血的制备和培养3负责人:实验室人员和临床相关人员。4内容4.1耗材:50毫升离心管、10毫升移液管、5毫升移液管、75平方厘米培养瓶、150平方厘米培养瓶、电生理管和1.8毫升冷冻管4.2试剂:X-VIVE 15TM、PBS缓冲液、75%医用酒精、人淋巴细胞分离液、CD3/CD28免疫磁珠、白介素-2、注射用人血清白蛋白。4.3环境:4.3.1外周血的分离培养应在10000级恒温恒湿层流室中进行,开放操作必须在100级生物安全柜中进行。4.3.2实验室人员应提前对净化室和生物安全柜进行消毒,紫
2、外线照射时间为不少于30分钟。消毒后,净化空调的开启时间不应少于30分钟。只有生物安全柜运行稳定,才能运行。4.4操作:4.4.1收集和接收外周血4.4.1.1的病人符合治疗计划,所有测试都符合要求。收集60-80毫升外周血。4.4.1.2接收外周血并填写外周血采集交接记录,检查外周血患者的相关信息和医院提供的相应检测报告,至少包括乙型肝炎表面抗原、丙型肝炎病毒抗体、乙型肝炎病毒抗体、抗总蛋白和谷丙转氨酶。4.4.2操作前的准备4.4.2.1净化室和生物安全柜消毒后,打开净化空调运行30分钟,这就是生物安全整个机柜运行稳定。4.4.2.2从试剂室的冰箱中取出细胞培养基,并将其恢复到室温。4.4
3、.2.3生物安全柜表面用75%酒精消毒,外周血袋表面用酒精消毒后转移至安全柜。4.4.3单核细胞的分离(PBMC):4.4.3.1用消毒剪刀剪断血袋的塑料管,或者用一次性注射器放入血袋将外周血转移到50毫升离心管中。4.4.3.2根据1:1用PBS缓冲液稀释外周血,并混合均匀。4.4.3.3在室温下将稀释的血样缓慢加入15毫升人淋巴细胞分离液的离心管中。方法如下:用10毫升移液管吸取血样,将其延伸至分离液液面以上0.5厘米处,自然滑动血样,将其铺在分离液液面上,然后轻轻加入血样,注意不要突破液面。4.4.3.4以1200克(2100转/分钟)离心20分钟,然后缓慢增加和减少。4.4.3.5离心
4、完成后,离心管自下而上呈现明显的分层现象:红细胞层、粒细胞层、菲科尔层、单核细胞层和血浆层。将血浆层吸到距离白色膜层约5毫米的地方,然后丢弃它。小心地将红细胞层以上的所有液体吸入离心管,用PBS稀释,与细胞悬液的体积比应大于1:3,并混合均匀。4.4.3.6以600克(1600转/分钟)离心5分钟,将细胞重悬于PBS中,并计数少量细胞。4.4.3.7以300克(1200转/分钟)离心5分钟,上清液送去进行无菌检查。4.4.4细胞培养:4.4.4.1细胞培养条件:恒温37,CO2浓度5%,相对饱和湿度95%,细胞培养基酸碱度7.2-7.4。根据细胞计数,将4.4.4.2加入到密度调节为2x106
5、/ml的培养瓶中(T150 200x106/100ml,T75 100x106/50ml,T25 50x106/25ml)。混合均匀,放入CO2培养箱中2小时。4.4.4.3拿出培养瓶,轻轻摇晃,让悬浮在底部的细胞漂浮起来。培养瓶倾斜30度。用移液管吸取培养基并转移到离心管中。在培养瓶中洗涤较少的培养基以收集所有悬浮的细胞,将其均匀混合并计数。根据细胞计数,4.4.4.4将细胞浓度调整为1.2x106/ml,接种培养瓶(T150中100-120毫升,T75中50-60毫升,T25中15-29毫升),加入CD3/CD28磁珠,并按细胞与磁珠的比例1,333,603加入白介素-1(加入前,磁珠用培
6、养基洗涤3次,取出保存液)。4.4.4.5细胞是邪教根据4.4.4.9的细胞状况和临床治疗需要,经过9天的培养,细胞数量达到要求,各项检测均合格。包括无菌检查、内毒素检查、细胞活力、细胞表型等。4.4.5汽车T细胞采集:4.4.5.1证实所有细胞测试都符合要求。根据治疗方案(一般一个疗程分为多次回输,间隔一天),在4.4.5.2取出相应的细胞悬液,剩余细胞补充培养基进一步回输。将4.4.5.3细胞悬浮液转移到离心管中,并在300克离心5分钟。4.4.5.4去除上清液,稀释并与PBS缓冲液混合,以300克离心5分钟,弃去上清液,在PBS缓冲液中以300克/分钟离心5分钟。4.4.5.5细胞装袋(一般静脉回输,采用100毫升双阀生理盐水袋),离心后取上清液,进行无菌检查。将细胞重悬于20毫升生理盐水中,用100m细胞滤器过滤,取少量细胞悬液进行细胞计数、细胞活力、革兰氏染色和内毒素检查。细胞过滤完成后,将其转移至100毫升生理盐水袋中,加入5%的人血白蛋白进行注射,贴上标签,并填写相关记录。4.5细胞运输和保存:4.5.1检查单元格标签的内容,并填写退发记录。4.5.2将细胞盐水袋放入运输容器中(一般为疫苗盒,4度),并填写交接记录表。4
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