动物的给药、麻醉、处死术ppt课件

第四，实验动物给药方法，实验目的：通过实验，掌握动物实验中常用的给药方法。例如口服、皮下注射、皮内注射、腹腔注射、肌肉注射、静脉注射。实验材料：实验动物是老鼠，老鼠设备包括胃针(包括圆珠头)、橡胶皮胃管、开口器、注射器、针(4号、4号半、5号、5号半、6号)、镊子酒精棉棒、脱脂消毒棉棒、老鼠注意：注意动物被学生咬，注意注射器伤人。1，1，口服(1)在饲料或饮用水中添加药物，并自由食用动物的方法。(b)胃管营养法是利用仪器将药物直接注入动物胃的方法。操作时注意不要伤害动物。药量小鼠(20-24)0.5毫升，老鼠(100-199)3毫升，豚鼠(250-300)4-6毫升，兔子(2000-3000)10001.在胃针中插入老鼠、老鼠、豚鼠胃管营养品时，将观音后壁轻轻向下推，沿着口腔天花板轻轻接触人头，用动物的吞咽动作将食道推进小鼠胃，插入约3厘米深。如果不小心插入器官，动物可能会遇到困难。实验方法，2，3，2。兔子，猫胃管，兔子胃灌溉用竹子或木头打开器，一杯清水，洗胃用导管12号或14号。4，3。狗胃管营养法，5，2，注射剂(1)皮下注射，经常皮下注射颈背或大腿内侧皮肤。提起皮肤，注射针以钝角刺皮下，左右轻轻摇动针，容易动摇的是刺皮下，推药物，慢慢拔出注射针，然后用手指按针部分，防止药物流出。注射量约为0.1-0.3毫升/10g体重。6，(2)皮内注射通常用作接种或过敏实验等皮内注射。首先，切断注射部位的毛进行局部消毒，按压左手拇指和食指使皮肤绷紧，针和皮肤呈30度角，紧贴皮肤皮层，刺入皮肤内部，针的横截面朝上，针进入皮肤浅部，向上一点刺，将药物注入皮肤。注射后皮肤会出现小白皮蛋，但皮肤的毛孔极为明显。注入量为0.1毫升/分钟。7，(3)肌肉注射，老鼠小，肌肉少，几乎不使用肌肉注射。肌肉注射不溶于水，在油或其他溶剂中混合药物时使用。药量不超过0.1毫升/10g体重。8，(4)静脉注射给药小鼠尾静脉注射：75%酒精棉棒反复擦拭尾部部位，消毒，扩张尾部血管的目的。用左手拇指和食指捏住老鼠尾巴的两侧，使其更填满静脉，右手拿着4号针注射器，注射针与静脉平行(小于30度)，在尾部的下四分之一处用注射针注入0.05-0.1ml/10g体重。9、兔耳静脉给药：首先拔下注射部位的毛，用手指弹兔子耳朵，或轻轻揉搓，静脉就会充满，右手拿注射器，6号针尽可能从静脉的远处扎进去，如果有血的话，将药液全部注入，然后取出注射针，用干棉棒暂时压迫针孔。10，狗静脉注射：多选择前腿皮下头静脉或后腿小隐静脉注射。11，12，(5)腹部注射，使老鼠腹部朝上，鼠标比尾部稍低，下腹部附近两侧穿刺，注射针到达皮下后，稍向前刺针45度，腹部，保持针尖不变，血液、浆液、尿液未退回后可注射。注射量为0.1-0.2毫升/10g体重。13，(6)脑给药大鼠，鼠脑给药多用于将细菌接种到动物大脑，观察接种后的各种变化。(7)阴茎静脉注射是雄性老鼠常用的方法。(8)鞘内注射主要用于兔椎管麻醉或脑脊液提取。14，(9)关节内注射适合兔注射。(10)椎动脉注射适用于兔子和猫。(11)外颈静脉注射给药方法适用于狗静脉给药。(12)蟾蜍淋巴囊内注射，15，3，呼吸系统给药，呼吸系统给药主要指老鼠，老鼠。处于灰尘、气体或烟雾等状态的受试者必须通过呼吸系统注射。16，4，涂膜给药，老鼠，鼠标经常使用尾部皮肤给药，以确定药物或毒物的质量，通过皮肤吸收效果。豚鼠、兔涂层的部位通常是脊椎两侧的背部皮肤，给药部位需要脱毛后24小时。第五，直肠给药和阴道给药法，17，根据实验动物种类，一次给药的最大容量(ml)，注意：一次给药的最大容量不能超过表格内的数值。18，5，实验动物麻醉方法和方法，实验动物麻醉有吸入麻醉、注射麻醉、口服和胃麻醉剂、针刺麻醉。麻醉和麻醉剂的使用取决于实验目的、动物种类、年龄和动物的健康状态。19，实验目的：通过麻醉动物，掌握最常用的吸入和注射麻醉方法和多种动物、不同麻醉剂的使用方法及使用剂量。实验材料：动物性：老鼠、老鼠、兔子或狗药：乙醚、奥本维达钠、咖啡因器具：麻醉箱或其他密封容器，如烧瓶、棉签、20，实验方法：(a)全身麻醉法1。吸入法：吸入麻醉是通过呼吸系统吸入乙醚、氯仿等挥发性麻醉剂，产生麻醉效果的方式。这种方法最适用于大白鼠的短期手术试验麻醉。将老鼠、老鼠或兔子放入杯子或圆柱体内，将乙醚倒入棉花，在室温下逐渐将乙醚挥发为气体，在气缸中麻醉动物，在动物倒下后立即去除的时候，动物肌肉松弛，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失。21，2。注射麻醉法：注射麻醉是使用非挥发性全身麻醉剂麻醉的方法。麻醉注射方法简单，麻醉时间长，适用于需要长时间麻醉的动物实验。麻醉一般用腹腔注射、静脉注射、替帕托莫钠、戊巴比妥钠、氯胺酮、水合氯醛、乌拉尔坦等方法进行。兔子、猫、狗、猪等大动物，静脉注射、肌肉注射、容量30-35mg/kg；老鼠、老鼠、豚鼠等小型动物使用40-50mg/kg容量的腹腔注射法。22，(2)局部麻醉剂局部麻醉作为局部麻醉剂，通过切断周围神经末梢或神经节、神经丛、神经丛的冲动，形成有限的麻醉区域。局部麻醉的特点是动物们保持清醒，轻微干涉重要的器官功能，减少麻醉并发症是更安全的麻醉方法。局部麻醉剂分为可卡因、普鲁卡因、丁卡因、氯普鲁卡因的酯和酰胺类。酰胺局部麻醉剂包括利多卡因、布比卡因、卡波卡因和迪布卡因。23、局部麻醉最常用于表面麻醉、浸润麻醉和局部阻断麻醉、脊髓麻醉等，最常用于浸润麻醉。表面麻醉：通过将穿透力强的局部麻醉剂直接作用于粘膜表面，进行粘膜下神经末梢麻醉，可以将药物与不同浓度的溶液、凝胶、膏剂配合，注入眼睛、口腔、鼻腔、喉外耳道或尿道等粘膜，从而产生麻醉。多使用丁卡因和利多卡因。丁卡因用于眼部手术，利多卡因用于猫气管插管前咽喉表面麻醉。24，针润麻醉及区域阻滞麻醉：按局部麻醉剂或手术区域周围部位沿手术切口线逐层注射，切断神经纤维，达到麻醉效果。前者称为浸润麻醉，后者称为区域麻醉。适用于狗、猫皮肤撕裂窗口缝合、去除皮肤疣及皮肤肿瘤、小狗切除、皮肤活动组织收集。脊髓麻醉也称为椎管注射麻醉或脊髓硬膜外麻醉。多用于剖腹产。25，(3)麻醉事故抢救措施1。针刺人重点对兔子结构效果好，对狗来说，每分钟几百次脉冲电刺激膈神经的效果好。2.强心剂(1)肾上腺素注射0.1%肾上腺素1毫升(0.5-1毫克)，必要时可以直接注射心脏。但是不能在氟烷麻醉中使用。肾上腺素增加心肌压力，增加心肌收缩力，加速心跳，增加心肌血容量。(2)阿托品有副交感神经阻断剂、兴奋性窦房结及房室结、加速心率，还有特定的再跳作用。用于治疗鼻窦、心室颤动等。26，3。呼吸中枢兴奋剂注射可从静脉注射西唑烷、尼考塞米、芬太尼氮或美坦睡眠(类似于戊四醇)，可以快速注射高渗透葡萄糖(40%)，快速输血注射或人工呼吸。27，掌握老鼠、老鼠、仓鼠、豚鼠、兔子、狗、猫的处死方法，想在处死动物的过程中尽量减少动物的痛苦。6、实验动物死刑法，28、实验动物死刑法：1。颈椎脱位法2。空气栓塞3。急性出血法4。断头台法5。打击法6。化学药品致死法，29，颈椎脱位法：用左拇指和食指抓住老鼠头的后面，打嗝，用右手抓住老鼠尾巴，向后用力拉，颈部骨头会脱臼，瞬间死亡。空气栓塞将一定数量的空气注入动物的静脉，使栓塞致死。兔子一般选择耳静脉。向兔子静脉注入20-40毫升空气会致死。打击w :破坏连脑，或用木锤猛击后脑。30、急性出血法轻微麻醉后固定在手术台上做股骨手术。暴露出股三角形部位，分离股动脉(向心脏夹住动脉)，插入塑料管。打开动脉夹，让血液流入容器，在一般动物3-5min内可能会致命。除了股动脉，总颈动脉还流血。这种方法杀死动物比较安静，不损害内脏器官，在采集病理切片标本的同时采集血液，是更好的方法。兔子可以用这种方法处决。31、化学药品致死法适用于多种动物。可以吸入二氧化碳、醚、三氯甲烷等而死。注射过量的麻醉剂会导致动物死亡，数量是深度麻醉容量的5-10倍，动物在10-15分钟内死亡。32，7，实验动物毛发去除方法，动物毛发去除往往会影响实验工作和结果观察，因此实验中经常需要去除或剪短动物毛发。去除毛发的方法有三种：剃毛、拔毛、脱毛。剪毛：固定动物后，用粗糙的刀刮所需部位的毛。刮毛的时候要注意以下事项：剪刀不能贴在皮肤上切。用手抬起头发，防止皮肤破裂。依次剪头发，不要随便剪。剪下的毛集中在一个容器上，防止留在手术夜和兔子台周围，清洁手术夜，防止注射器等芬奇。33，拔河：兔耳静脉注射或采血，及尾静脉注射，用拇指、食指局部毛拔起，起作用。脱毛：脱毛是用化学药品去除动物毛发，适合无菌手术场的准备和观察动物局部皮肤血液循环和病理变化。34，一般脱毛配方：硫化钠3g，肥皂粉1g，淀粉7g，水适量转换为膏状。硫化钠8g，淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂